可能原因 | 驗證或解決辦法 | |
背景高 | 膜沒(méi)有W全均勻濕透 | 使用100% 甲醇浸透膜5-10min |
洗膜不充分 | 增加洗液體積和洗滌次數 | |
阻斷不充分 | 增加封閉液孵育時(shí)間,或者提高溫度。選擇合適的封閉試劑(脫脂奶粉,BSA,酪蛋白等) | |
二抗濃度過(guò)高 | 降低二抗濃度 | |
檢測過(guò)程中膜干燥 | 保證充分的反應液,避免出現干膜現象 | |
曝光過(guò)度 | 縮短曝光時(shí)間 | |
抗體與阻斷蛋白有交叉反應 | 檢測抗體與阻斷蛋白的交叉反應性,選擇無(wú)交叉反應的封閉劑。洗滌液中加入Tween-20可減少交叉反應 | |
沒(méi)有陽(yáng)性條帶,或者陽(yáng)性條帶比較弱 | 抗體染色不充分 | 增加抗體濃度,延長(cháng)孵育時(shí)間 |
酶失活 | 直接將酶和底物進(jìn)行混合,如果不顯色則說(shuō)明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯(lián)物 | |
標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低 | 設置陽(yáng)性對照,如果陽(yáng)性對照有結果,但標本沒(méi)有則可能是標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低??煽紤]增加標本上樣量解決靶蛋白含量低的原因。 | |
試劑不匹配 | 一抗與組織種屬,一抗與二抗或/和底物與酶系統之間不匹配。通過(guò)設置內參照可以驗證二級檢測系統的有效性 | |
一抗失效 | 選擇在有效期內抗體;并選擇現配現用的工作液 | |
HRP抑制劑 | 所用溶液和容器中避免含有D氮化鈉 | |
膜沒(méi)有W全均勻濕透 | 使用100%甲醇浸透膜 | |
靶蛋白分子量小于10Kd | 選擇小孔徑的膜,縮短轉移時(shí)間 | |
甲醇濃度過(guò)高 | 過(guò)高甲醇濃度會(huì )導致蛋白質(zhì)與SDS分離,從而沉淀在凝膠中,同時(shí)會(huì )使凝膠收縮或變硬,從而抑制高分子量蛋白的轉移。降低甲醇濃度或者使用乙醇或異丙醇代替 | |
轉移時(shí)間不夠 | 對于厚的膠以及高分子量蛋白需要延長(cháng)轉移時(shí)間 | |
抗體染色不充分 | 增加抗體濃度,延長(cháng)孵育時(shí)間 | |
標本中靶蛋白含量太低 | 增加標本上樣量。 | |
HRP抑制劑 | 所用溶液和容器中避免含有D氮化鈉 | |
抗體活性降低 | 選擇在有效期內的抗體,工作液現配現用,避免長(cháng)時(shí)間放置 | |
封閉過(guò)度 | 減少封閉劑的量或縮短時(shí)間;換用不同封閉劑類(lèi)型 | |
曝光時(shí)間過(guò)短 | 延長(cháng)曝光時(shí)間 | |
條帶位置不對;或有非特異性條帶 色帶) | 二抗的非特異性結合 | 增加一個(gè)對照:不加一抗,其他操作過(guò)程不變,即可驗證背景是否由二抗系統來(lái)源。選擇其他二抗(特異性更強的,只針對重鏈的) |
一抗的特異性不夠 | 使用單克隆或者親和純化的抗體,保證抗體的特異性 | |
蛋白降解 | 使用新鮮制備的標本,并使用蛋白酶抑制劑 | |
二聚體或多聚體存在 | 增加蛋白質(zhì)變性過(guò)程及強度 | |
抗體濃度過(guò)高 | 降低抗體(一抗、二抗)濃度,可以減少非特異性條帶 | |
蛋白上樣量過(guò)大 | 降低上樣量 | |
封閉劑中有聚集體 | 使用前過(guò)濾封閉試劑 | |
HRP耦聯(lián)二抗中有聚集體 | 過(guò)濾二抗試劑,去除聚集體 | |
HRP含量過(guò)高 | 降低酶聯(lián)二抗的濃度 |